Институты
enruTat
Войти в ЭИОС
Войти в ЭИОС
Абитуриенту
Студенту
Об университете
Наука

СОВМЕСТИМОСТЬ АГЕНТОВ БИОЛОГИЧЕСКОЙ ЗАЩИТЫ РАСТЕНИЙ PSEUDOMONAS PUTIDA PCL1760 И TRICHODERMA ASPERELLUM Т302

Валидов Ш.З.
DOI 10.12737/2782-490X-2026-5-1-64-71Странницы 64-71
КЛЮЧЕВЫЕ СЛОВА
биологическая защита растенийPseudomonas putidaTrichoderma asperellumFusarium oxysporumсовместимость штаммовкорневая гнильколонизация ризосферы.
СПИСОК ПРОЦИТИРОВАННЫХ ИСТОЧНИКОВ
  1. Montesinos E. Development, registration and commercialization of microbial pesticides for plant protection. Int. Microbiol. 2003; 6: 245–252. DOI: 10.1007/s10123-003-0144-x
  2. Сафроновская Г. Биопестициды – перспективный сегмент рынка средств защиты растений. Наше сельское хозяйство. 2021; 1(249): 28–35 EDN OKXYHL.
  3. Lugtenberg, B. Plant-growth-promoting rhizobacteria / B. Lugtenberg, F. Kamilova // Annual Review of Microbiology. – 2009. – Vol. 63. – P. 541-556. – DOI 10.1146/annurev.micro.62.081307.162918.
  4. Haas D., Defago G. Biological control of soil-borne pathogens by fluorescent pseudomonads. Nat. Rev. Microbiol. 2005; 3: 307–319. DOI: 10.1038/nrmicro1129
  5. Использование биоудобрений и биопестицидов для экологически чистого земледелия / Г. Атаев, С. Рахманов, А. Досназарова, Д. Довлетгелдиев. Eo ipso. 2024; 12: 65–67 EDN KBGNBW.
  6. Приемы повышения эффективности применения биологических препаратов в растениеводстве / Г. Н. Агиева, Л. С. Нижегородцева, Р. Ж. К. Диабанкана [и др.]. Вестник Казанского государственного аграрного университета. 2020; 15(4(60)): 5–9. DOI 10.12737/2073-0462-2021-5-9.
  7. Алферов А. А. Влияние почвенно-климатических условий на эффективность биопрепаратов и азотных удобрений при выращивании ячменя. Агрохимический вестник. 2017; 6: 38–42 EDN SZIIRD.
  8. Алексеева К. Л., Аникеева Н. А. Защита огурца от корневых гнилей при совместном действии биопрепаратов и регуляторов роста. Аграрный вестник Урала. 2009; 11(65): 49–50 EDN LALSCR.
  9. Ростостимулирующий эффект микроорганизмов и химических фунгицидов при комплексном применении на томатах / Л. З. Каримова, Ш. З. Валидов, Г. Ф. Рахманова, А. Р. Валиев. Вестник Казанского государственного аграрного университета. 2025; 20(4(80)): 39–46. DOI 10.12737/2073-0462-2025-20-4-39-46.
  10. Keel C., Schnider U., Maurhofer M., Voisard C., Laville J., Burger U., Wirthner P., Haas D., Defago G. Suppression of root diseases by Pseudomonas fluorescens CHA0: importance of the bacterial secondary metabolite 2,4-diacetyl phloroglucinol. Mol. Plant-Microbe Interact. 1992; 5(1): 4–13. DOI: 10.1094/MPMI-5-004.
  11. Chin-A-Woeng T. F. C., Bloemberg G. V., Lugtenberg B. J. J. Phenazines and their role in biocontrol by Pseudomonas bacteria. New Phytol. 2003; 157: 503–523. DOI: 10.1046/j.1469-8137.2003.00686.x
  12. Makhlouf K. E., Boungab K., Mokrani S. Synergistic effect of Pseudomonas azotoformans and Trichoderma gamsii in management of Fusarium crown rot of wheat. Arch. Phytopathol. Plant Protect. 2023; 56(2): 108–126. DOI: 10.1080/03235408.2023.2172964
  13. Selection of bacteria able to control Fusarium oxysporum f. sp. radicis-lycopersici in stonewool substrate / S. Validov, F. Kamilova, S. Qi [et al.]. J. Appl. Microbiol. 2007; 102(2): 461–471. DOI 10.1111/j.1365-2672.2006.03083.x.
  14. Выделение, очистка и биологическая активность вторичных метаболитов Trichoderma asperellum F‑1087 / Л. М. Залялютдинова, А. Г. Бикмуллин, Р. И. Тухбатова [и др.]. Прикладная биохимия и микробиология. 2018; 54(2): 201–205. DOI: 10.7868/S0555109918020207
  15. Genomic Features of Pseudomonas putida PCL1760: A Biocontrol Agent Acting via Competition for Nutrient and Niche / D. M. Afordoanyi, R. G. C. Diabankana, A. K. Miftakhov [et al.]. Appl. Microbiol. 2022; 2(4): 749–765. DOI: 10.3390/applmicrobiol2040051
  16. Pierson L. S. III, Thomashow L. S. Cloning and heterologous expression of the phenazine biosynthetic locus from Pseudomonas aureofaciens 30-84. Mol. Plant-Microbe Interact. 1992; 5(4): 330–339. DOI: 10.1094/MPMI-5-330
  17. Genomic Differences Between Two Fusarium oxysporum Formae Speciales Causing Root Rot in Cucumber / E. N. Komissarov, R. G. C. Diabankana, I. Abdeeva [et al.]. J. Fungi. 2025; 11(2): 140. DOI: 10.3390/jof11020140
  18. Wu J., Chen Y., Xu X., Ren W., Zhang X., Cai X., Huang A., Zeng Y., Long H., Xie Z. Screening of bioflocculant and cellulase-producing bacteria strains for biofloc culture systems with fiber-rich carbon source. Front. Microbiol. 2022; 13: 969664. DOI: 10.3389/fmicb.2022.969664
  19. Simons M., van der Bij A. J., Brand I., de Weger L. A., Wijffelman C. A., Lugtenberg B. J. J. Gnotobiotic system for studying rhizosphere colonization by plant growth-promoting Pseudomonas bacteria. Mol. Plant Microbe Interact. 1996; 9(7): 600–607. DOI: 10.1094/MPMI-9-0600
  20. Validov S. Z., Kamilova F. D., Lugtenberg B. J. J. Monitoring of pathogenic and non-pathogenic Fusarium oxysporum strains during tomato plant infection. Microb. Biotechnol. 2011; 4(1): 82–88. DOI: 10.1111/j.1751-7915.2010.00208.x
  21. Carbone I., Kohn L. M. A method for designing primer sets for speciation studies in filamentous ascomycetes. Mycologia. 1999; 91(3): 553–556. DOI: 10.2307/3761358
  22. Кунгуров Г. А., Максимова К. В., Куватова А. В., Валидов Ш. З. Сравнительная оценка действия нафталин‑1,2‑диоксигеназы на продуктивность синтеза индол‑3‑уксусной кислоты и ростостимулирующую активность бактерий рода Pseudomonas. Ученые записки Казанского университета. Серия Естественные науки. 2026; 168(1): 109–123. https://doi.org/10.26907/2542-064X.2026.1.109-123
  23. Validov S. Z., Kamilova F., Lugtenberg B. J. J. Pseudomonas putida strain PCL1760 controls tomato foot and root rot in stonewool under industrial conditions in a certified greenhouse. Biol. Control. 2009; 48(1): 6–11. DOI: 10.1016/j.biocontrol.2008.08.008
  24. Bolwerk A, Lagopodi AL, Lugtenberg BJ, Bloemberg GV. Visualization of interactions between a pathogenic and a beneficial Fusarium strain during biocontrol of tomato foot and root rot. Mol Plant Microbe Interact. 2005 Jul;18(7):710-21. doi: 10.1094/MPMI-18-0710.
  25. Lorito M., Farkas V., Rebuffat S., Bodo B., Kubicek C. P. Cell wall synthesis is a major target of mycoparasitic antagonism by Trichoderma harzianum. J. Bacteriol. 1996; 178(21): 6382–6385. DOI: 10.1128/jb.178.21.6382-6385.1996
  26. Алимова Ф. К. Некоторые вопросы применения препаратов на основе грибов рода Trichoderma в сельском хозяйстве. Агро ХХI. 2006; 4–6: 18–21. EDN IAKWEP.
  27. Harman G. E., Howell C. R., Viterbo A., Chet I., Lorito M. Trichoderma species – opportunistic, avirulent plant symbionts. Nat. Rev. Microbiol. 2004; 2(1): 43–56. DOI: 10.1038/nrmicro797
ДЛЯ ЦИТИРОВАНИЯ
Валидов Ш.З. СОВМЕСТИМОСТЬ АГЕНТОВ БИОЛОГИЧЕСКОЙ ЗАЩИТЫ РАСТЕНИЙ PSEUDOMONAS PUTIDA PCL1760 И TRICHODERMA ASPERELLUM Т302 // Агробиотехнологии и цифровое земледелие стр. 64-71. DOI:10.12737/2782-490X-2026-5-1-64-71